用于將細菌區分成革蘭氏陽性或革蘭氏陰性之染色液。傳統革蘭氏染色方法對于脫色時間較難掌控，往往因為脫色過度，而將應該是Gram陽性菌誤染成Gram陰性菌，其所花費的時間更長達4分鐘之久。快速革蘭氏染色液可以大幅縮短染色時間，整個染色過程只需1分鐘，而且幾乎沒有偽陰性惰形發生，是目前實驗室最佳的選擇。試藥內容：1.結晶紫(Crystal Violet) x 1 250ml2.碘液(Iodine Solution) x 1 250ml3.脫色劑(Decolorizer) x 1 250ml4.沙黃溶液(Safranin Solution) x 1 250ml操作方法：1. 加結晶紫，染色10秒，之后水洗，甩干。2. 加碘液，染色10秒，之后水洗，甩干。3. 以脫色劑脫色10~20秒，之后水洗，甩干。4. 最后加沙黃溶液，復染10秒，之后水洗。5. 以濾紙吸干或在空氣中陰乾后，鏡檢。結果判定：Gram陽性菌(Gram-Positive)呈紫色。Gram陰性菌(Gram-Negative)呈紅色。
發布時間:
2019
-
07
-
18
瀏覽次數：136
1、操作步驟 （1）取下顯微鏡的防塵罩，接通電源，開啟電源開關，根據玻片性質調整內置照明燈光亮度及光圈大小，使視野亮度處于合適范圍； （2）將事先準備好的玻片放到載物臺上，用標本片夾持器夾好，轉動移動手輪使等觀察樣品大致位于物鏡正下方； （3）拉開顯微鏡的電子眼，并打開電腦上的工作站，將屏幕調整到合適大小移到中間； （4）先用低倍物鏡（4倍）觀察樣品，轉動粗準焦螺旋和移動手輪，把樣品移到視野中間并調至清晰； （5） 轉動轉換器，使高倍物鏡（10倍）對準樣品，調節細準焦螺旋，使視野清晰；如果樣品稍有偏離視野中央則調節移動手輪把樣品調到中央； （6） 再次轉動轉換器，使高倍物鏡（40倍）對準樣品進行觀察，方法同10倍物鏡操作方法；此時視野亮度可能會變暗，應當調節內置照明燈光亮度及光圈大小使視野亮度處于合適范圍； （7） 觀察完樣品后，取下載玻片，先將聚光器降下，再將物鏡轉成“八”字形，轉動粗調節器使鏡筒下降，以免接物鏡與聚光器相碰，并將鏡筒緩緩下降到最低處，關掉電子眼及工作站，關閉電源，罩上防塵罩，將顯微鏡歸位。 2、日常維護 （1）顯微鏡要放在干燥的地方，不能在陽光下暴曬和使用； （2）不要隨意取下目鏡，以防止塵土落入物鏡，也不要任意拆卸各種零件，以防損壞...
發布時間:
2019
-
09
-
30
瀏覽次數：117
搖出式聚光鏡（Swing out condenser）在使用低倍物鏡時（如4X），由于視場大，光源所形成的光錐不能充滿整個視場，造成視場邊緣部分黑暗，只中央部分被照亮。要使視場充滿照明，就需將聚光鏡的上透鏡從光路中搖出。
發布時間:
2019
-
09
-
20
瀏覽次數：95
TB菌因細胞璧富含脂質，因此能抵抗鹽酸酒精的脫色。TB Stain結核菌染色液為化學染色劑，主要用于對結核桿菌等抗酸性菌的化學染色。抗酸染色一般有二種常用方法：1)鹼性復紅法(Ziehi-Neelsen法)；2)螢光染色金胺O法(也稱為金胺O-羅丹明法)。本染劑系應用的方法原理改良而成，染色過程不必加熱。結核菌、麻瘋桿菌等抗酸性菌，因其菌體表面有一層類脂或脂質之皮膜不易著色，但一經著色后，酸及乙醇的作用亦是不容易把它脫色。利用此特性并以增強的染色予以染色，然后再以酸及乙醇加以處理，使其脫色后對比染色，此時抗酸性菌仍是固定著最初染上的顏色(紅色)，也就易于監別。結核菌染色液 試藥內容：1. Carbolfuchsin x 1 250ml(碳酸復紅溶液)2. Acid Alcohol x 2 250ml(酸性酒精)3. Counter Stain x 1 250ml(復染劑)操作方法：1. 涂片經火焰固定，加碳酸復紅溶液于涂片上，染色10min。(不需加溫步驟 )2. 放冷后，水洗。(水洗之后，盡可能將水份瀝乾或以濾紙吸干)。3. 加酸性酒精脫色2min。4. 水洗。(假設標本面還可以看到殘存紅色時，再添加酸性酒精至完全脫掉紅色為止)。5. 加復染劑染色10~30秒，水洗、干燥、鏡檢。結果判定：抗酸性菌(為結核菌)呈紅色，其它細菌及細胞呈藍色。結核菌...
發布時間:
2019
-
07
-
02
瀏覽次數：121
1、相差物鏡的調換安裝從物鏡轉換器上拆下普通物鏡，旋入相差物鏡，與普通目鏡配套使用。 2、轉盤聚光器的調換安裝旋轉聚光器升降螺旋，把普通明視場聚光器至最低位，旋松固緊螺絲，卸下聚光器。把轉盤聚光器安放到相應位置上，旋緊固緊螺絲，轉動聚光器升降螺旋，使聚光器升至最高位置。轉盤聚光器的標示孔，朝向操作者。此時，轉盤聚光器上面的聚光鏡部分，進入光路；下面的環狀光闌轉盤，可視需要轉動使用，把與物鏡匹配的環孔旋入光路，使之處于轉盤聚光鏡下。 3、把綠色濾色鏡放入鏡座的濾色鏡架上轉盤聚光器調換安裝后，要進行合軸調中，使聚光器的光軸與顯微鏡的主光軸合一。其步聚如下： （1）把轉盤聚光器的環狀光闌調至“0”位，明視場照明的普通可變光闌進入光路。 （2）旋轉聚光器升降螺旋，聚光器升至最高位。 （3）接通照明光源，使視場明亮。 （4）把被檢樣品放到載物臺上，用低倍（4×）物鏡聚焦。 （5）縮小鏡座上的視場光闌開孔，至最小。 （6）從目鏡觀察，在暗視場中可見一縮小的、明亮的、多角形的視場光闌圖像。 （7）轉動轉盤聚光器的兩個調中桿，推動聚光器，把視場中的明亮的多角形的視場光闌圖像，調至視場中央。 （8）開放視場光闌至視場同大，視兩者周邊是否完全重合；否則，復用調中螺桿，使聚光器精神調中。...
發布時間:
2019
-
09
-
30
瀏覽次數：230
DIC 與相差成像技術的最根本區別體現在它的光學基礎上。通過比較可知，這兩種“對比增強型”成像效果區別明顯，但同時又有很多相似之處。擴展閱讀：倒置顯微鏡微分干涉觀察時的影響因素有哪些？ 在相差成像中，圖片的密度區別源于光通過樣品時的路程長短不一。灰背景正相差下，那些較厚的區域（光程長）在視野中呈現較周圍暗的效果；相對的，較薄的樣品或折射率低于周圍介質的樣品在視野下則要亮些。 在DIC 成像技術中，情況又有些不同。DIC 成像時，決定對比度的首要因素是光通路中的梯度變化（即光波傳播方向上的變化率）。梯度大的區域在視野下對比度高，并呈現出“偽立體”效果——這是DIC 的特征效果；而梯度較小的區域，如扁平的上皮細胞，則不會有很明顯的對比度呈現，而且灰度值通常與背景相同。除了這兩種成像技術機制上的差異，它們還有很多其他方面的不同。如Figure 1 所示，為DIC 及相差技術下三組相同的樣品利用數字相機獲得的圖片。圖中第一行采用的是DIC 成像技術，下面一行采用了相差成像技術。我們可以看到，Figure 1(a) 圖中細胞及細胞核的周圍有一圈光暈存在，而Figure 1(b) 中則不存在這一現象。DIC 研究表明（方法未列出），在細胞的表面有細菌分布，而利用相差技術則檢測不到這一效果。 ...
發布時間:
2019
-
09
-
30
瀏覽次數：1687